2,43
1,65
1,98
0,73
1,88
1,81
2,43
2.2 Substances de référence utilisées dans la courbe d'étalonnage de la distribution des masses moléculaires relatives : insuline, mycopeptides, glycine-glycine-tyrosine-arginine, glycine-glycine-glycine
3. Instruments et équipements
23.2
21.4
22.2
16.1
22.3
20.8
23.9
27,5
Globalement, la proportion d'acides aminés dans les produits Sustar est supérieure à celle des produits Zinpro.
Partie 8 Effets de l'utilisation
Effets de différentes sources d'oligo-éléments sur les performances de production et la qualité des œufs des poules pondeuses en fin de ponte
Processus de production
Technologie de chélation ciblée
Technologie d'émulsification par cisaillement
Technologie de pulvérisation et de séchage sous pression
Technologie de réfrigération et de déshumidification
technologie de contrôle environnemental avancée
Annexe A : Méthodes de détermination de la distribution des masses moléculaires relatives des peptides
Adoption de la norme : GB/T 22492-2008
1. Principe du test :
La détermination a été effectuée par chromatographie de filtration sur gel haute performance (HPLC). Autrement dit, en utilisant une phase stationnaire poreuse, la séparation des composants de l'échantillon est basée sur la différence de masse moléculaire relative, détectée à la longueur d'onde d'absorption ultraviolette de 220 nm, correspondant à la liaison peptidique. Grâce au logiciel de traitement de données dédié à la détermination de la distribution des masses moléculaires relatives par chromatographie de filtration sur gel (logiciel GPC), les chromatogrammes et leurs données ont été traités et calculés afin d'obtenir la masse moléculaire relative du peptide de soja et son intervalle de distribution.
2. Réactifs
L'eau utilisée pour les expériences doit répondre aux spécifications de l'eau secondaire de la norme GB/T6682 ; les réactifs utilisés, sauf dispositions particulières, doivent être de pureté analytique.
2.1 Les réactifs comprennent l'acétonitrile (chromatographiquement pur), l'acide trifluoroacétique (chromatographiquement pur),
2.2 Substances de référence utilisées dans la courbe d'étalonnage de la distribution des masses moléculaires relatives : insuline, mycopeptides, glycine-glycine-tyrosine-arginine, glycine-glycine-glycine
3. Instruments et équipements
3.1 Chromatographe liquide haute performance (HPLC) : une station de travail ou un intégrateur chromatographique avec un détecteur UV et un logiciel de traitement des données GPC.
3.2 Unité de filtration sous vide et de dégazage de la phase mobile.
3.3 Balance électronique : valeur graduée 0,000 1 g.
4 étapes de fonctionnement
4.1 Conditions chromatographiques et expériences d'adaptation du système (conditions de référence)
- 4.1.1 Colonne chromatographique : TSKgelG2000swxl300 mm×7,8 mm (diamètre intérieur) ou autres colonnes de gel du même type avec des performances similaires convenant à la détermination des protéines et des peptides.
- 4.1.2 Phase mobile : Acétonitrile + eau + acide trifluoroacétique = 20 + 80 + 0,1.
- 4.1.3 Longueur d'onde de détection : 220 nm.
- 4.1.4 Débit : 0,5 mL/min.
- 4.1.5 Temps de détection : 30 min.
- 4.1.6 Volume d'injection de l'échantillon : 20 μL.
- 4.1.7 Température de la colonne : température ambiante.
- 4.1.8 Afin que le système chromatographique réponde aux exigences de détection, il a été stipulé que dans les conditions chromatographiques ci-dessus, l'efficacité de la colonne de chromatographie sur gel, c'est-à-dire le nombre théorique de plateaux (N), ne soit pas inférieure à 10 000 calculée sur la base des pics de l'étalon de tripeptide (Glycine-Glycine-Glycine).
- 4.2 Production de courbes d'étalonnage de masse moléculaire relative
- Les solutions étalons de peptides de différentes masses moléculaires relatives, à une concentration massique de 1 mg/mL, ont été préparées par ajustement de la phase mobile, mélangées dans des proportions définies, puis filtrées sur une membrane à phase organique de porosité comprise entre 0,2 et 0,5 μm et injectées dans l'échantillon. Les chromatogrammes des étalons ont ensuite été obtenus. Les courbes d'étalonnage de la masse moléculaire relative et leurs équations ont été obtenues soit en traçant le logarithme de la masse moléculaire relative en fonction du temps de rétention, soit par régression linéaire.
4.3 Traitement des échantillons
Peser avec précision 10 mg d'échantillon dans une fiole jaugée de 10 mL, ajouter un peu de phase mobile, agiter aux ultrasons pendant 10 min, afin que l'échantillon soit complètement dissous et mélangé, diluer avec la phase mobile jusqu'au trait de jauge, puis filtrer à travers une membrane de phase organique d'une taille de pores de 0,2 μm à 0,5 μm, et le filtrat a été analysé selon les conditions chromatographiques décrites en A.4.1.
- 5. Calcul de la distribution des masses moléculaires relatives
- Après analyse de la solution échantillon préparée en 4.3 dans les conditions chromatographiques de 4.1, la masse moléculaire relative de l'échantillon et son intervalle de distribution sont obtenus en substituant les données chromatographiques de l'échantillon dans la courbe d'étalonnage 4.2 à l'aide du logiciel de traitement des données GPC. La distribution des masses moléculaires relatives des différents peptides est calculée par la méthode de normalisation des aires des pics, selon la formule : X = A/Atotal × 100.
- Dans la formule : X - La fraction massique d'un peptide de masse moléculaire relative dans le peptide total de l'échantillon, % ;
- A - Aire du pic d'un peptide de masse moléculaire relative ;
- Total A - la somme des aires des pics de chaque peptide de masse moléculaire relative, calculée à une décimale près.
- 6. Répétabilité
- La différence absolue entre deux déterminations indépendantes obtenues dans des conditions de répétabilité ne doit pas dépasser 15 % de la moyenne arithmétique des deux déterminations.
- Annexe B : Méthodes de dosage des acides aminés libres
- Adoption de la norme : Q/320205 KAVN05-2016
- 1.2 Réactifs et matériaux
- Acide acétique glacial : analytiquement pur
- Acide perchlorique : 0,0500 mol/L
- Indicateur : violet de cristal à 0,1 % (acide acétique glacial)
- 2. Détermination des acides aminés libres
Les échantillons ont été séchés à 80°C pendant 1 heure.
Placer l'échantillon dans un récipient sec pour qu'il refroidisse naturellement à température ambiante ou jusqu'à une température utilisable.Peser environ 0,1 g d'échantillon (précision de 0,001 g) dans un flacon conique sec de 250 mL.Passez rapidement à l'étape suivante pour éviter que l'échantillon n'absorbe l'humidité ambiante.Ajouter 25 mL d'acide acétique glacial et bien mélanger pendant 5 minutes maximum.Ajouter 2 gouttes d'indicateur violet de cristalTitrer avec une solution titrée standard d'acide perchlorique à 0,0500 mol/L (±0,001) jusqu'à ce que la solution passe du violet au point final.
Noter le volume de solution standard consommé.
- Effectuez simultanément le test à blanc.
- 3. Calculs et résultats
- La teneur en acides aminés libres X dans le réactif est exprimée en fraction massique (%) et est calculée selon la formule : X = C × (V1-V0) × 0,1445/M × 100 %, dans la formule :
- C - Concentration de la solution standard d'acide perchlorique en moles par litre (mol/L)
- V1 - Volume utilisé pour le titrage des échantillons avec une solution standard d'acide perchlorique, en millilitres (mL).
- Vo - Volume utilisé pour le blanc de titrage avec une solution standard d'acide perchlorique, en millilitres (mL) ;
M - Masse de l'échantillon, en grammes (g).
| 0,1445 : Masse moyenne d'acides aminés équivalente à 1,00 mL de solution standard d'acide perchlorique [c (HClO4) = 1,000 mol / L]. | 4.2.3 Solution de titrage standard de sulfate de cérium : concentration c [Ce (SO4) 2] = 0,1 mol/L, préparée selon GB/T601. | |
| Adoption des normes : Q/70920556 71-2024 | 1. Principe de détermination (Fe comme exemple) | Les complexes de fer et d'acides aminés ont une très faible solubilité dans l'éthanol anhydre, tandis que les ions métalliques libres sont solubles dans l'éthanol anhydre. La différence de solubilité entre les deux dans l'éthanol anhydre a été utilisée pour déterminer le taux de chélation des complexes de fer et d'acides aminés. |
| Dans la formule : V1 - volume de solution standard de sulfate de cérium consommé pour le titrage de la solution d'essai, mL ; | Éthanol anhydre ; le reste est identique à la clause 4.5.2 de la norme GB/T 27983-2011. | 3. Étapes de l'analyse |
| Effectuez deux essais en parallèle. Pesez 0,1 g de l'échantillon séché à 103 ± 2 °C pendant 1 heure (précision de 0,0001 g). Ajoutez 100 mL d'éthanol anhydre pour dissoudre, filtrez, puis lavez le résidu de filtration avec 100 mL d'éthanol anhydre au moins trois fois. Transférez le résidu dans un erlenmeyer de 250 mL et ajoutez 10 mL de solution d'acide sulfurique conformément à la clause 4.5.3 de la norme GB/T 27983-2011. Suivez ensuite les étapes de la clause 4.5.3 « Chauffer pour dissoudre puis laisser refroidir » de la norme GB/T 27983-2011. Réalisez simultanément un essai à blanc. | 4. Détermination de la teneur totale en fer | 4.1 Le principe de détermination est le même que celui de la clause 4.4.1 de la norme GB/T 21996-2008. |
4.2. Réactifs et solutions
| 4.2.1 Acide mixte : Ajouter 150 mL d'acide sulfurique et 150 mL d'acide phosphorique à 700 mL d'eau et bien mélanger. | 4.2.2 Solution indicatrice de sulfonate de diphénylamine de sodium : 5 g/L, préparée selon GB/T603. | 4.2.3 Solution de titrage standard de sulfate de cérium : concentration c [Ce (SO4) 2] = 0,1 mol/L, préparée selon GB/T601. | |
| 4.3 Étapes de l'analyse | Effectuez deux essais en parallèle. Pesez 0,1 g d'échantillon (précision de 0,20001 g), placez-le dans un erlenmeyer de 250 mL, ajoutez 10 mL d'acide mixte, puis, après dissolution, ajoutez 30 mL d'eau et 4 gouttes de solution indicatrice de sulfonate de dianiline sodique. Suivez ensuite les étapes décrites au point 4.4.2 de la norme GB/T21996-2008. Réalisez simultanément un essai à blanc. | 4.4 Représentation des résultats | La teneur totale en fer X1 des complexes de fer des acides aminés, exprimée en fraction massique de fer (en %), a été calculée selon la formule (1) : |
| X1=(V-V0)×C×M×10-3×100 | V0 - solution standard de sulfate de cérium consommée pour le titrage de la solution témoin, mL ; | V0 - solution standard de sulfate de cérium consommée pour le titrage de la solution témoin, mL ; | C - Concentration réelle de la solution standard de sulfate de cérium, mol/L5. Calcul de la teneur en fer dans les chélatesLa teneur en fer X2 dans le chélate, exprimée en fraction massique de fer (%), a été calculée selon la formule : x2 = ((V1-V2) × C × 0,05585)/m1 × 100 |
| Dans la formule : V1 - volume de solution standard de sulfate de cérium consommé pour le titrage de la solution d'essai, mL ; | V2 - solution standard de sulfate de cérium consommée pour le titrage de la solution témoin, mL ;nom1 - Masse de l'échantillon, g. Prendre la moyenne arithmétique des résultats de détermination parallèle comme résultats de détermination, et la différence absolue des résultats de détermination parallèle ne doit pas dépasser 0,3 %. | 0,05585 - masse de fer ferreux exprimée en grammes équivalent à 1,00 mL de solution standard de sulfate de cérium C[Ce(SO4)2.4H20] = 1,000 mol/L.nom1 - Masse de l'échantillon, g. Prendre la moyenne arithmétique des résultats de détermination parallèle comme résultats de détermination, et la différence absolue des résultats de détermination parallèle ne doit pas dépasser 0,3 %. | 6. Calcul du taux de chélationTaux de chélation X3, la valeur exprimée en %, X3 = X2/X1 × 100Annexe C : Méthodes de détermination du taux de chélation de Zinpro |
Adoption de la norme : Q/320205 KAVNO7-2016
1. Réactifs et matériaux
a) Acide acétique glacial : pureté analytique ; b) Acide perchlorique : 0,0500 mol/L ; c) Indicateur : violet de cristal à 0,1 % (acide acétique glacial).
2. Détermination des acides aminés libres
2.1 Les échantillons ont été séchés à 80°C pendant 1 heure.
2.2 Placer l'échantillon dans un récipient sec pour qu'il refroidisse naturellement à température ambiante ou jusqu'à une température utilisable.
2.3 Peser environ 0,1 g d'échantillon (précision de 0,001 g) dans un erlenmeyer sec de 250 mL.
2.4 Passez rapidement à l'étape suivante pour éviter que l'échantillon n'absorbe l'humidité ambiante.
2.5 Ajouter 25 mL d'acide acétique glacial et bien mélanger pendant 5 minutes maximum.
2.6 Ajouter 2 gouttes d'indicateur violet cristal.
2.7 Titrer avec une solution titrée standard d'acide perchlorique à 0,0500 mol/L (±0,001) jusqu'à ce que la solution passe du violet au vert pendant 15 secondes sans changer de couleur comme point final.
2.8 Noter le volume de solution standard consommé.
2.9 Effectuez simultanément le test à blanc.
- 3. Calculs et résultats
- catalan
- Physicochemical parameters
V1 - Volume utilisé pour le titrage des échantillons avec une solution standard d'acide perchlorique, en millilitres (mL).
Vo - Volume utilisé pour le blanc de titrage avec une solution standard d'acide perchlorique, en millilitres (mL) ;
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
Adresse : 147, rue Qingpu, ville de Shouan, comté de Pujiang, ville de Chengdu, province du Sichuan, Chine
Téléphone : 86-18880477902
Produits
oligo-éléments inorganiques
- oligo-éléments organiques
- Swahili
- Service personnalisé
- Liens rapides
Profil de l'entreprise
| Application object | Suggested dosage (g/t full-value material) | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Gujarati | Cliquez ici pour toute demande de renseignements | © Droits d'auteur - 2010-2025 : Tous droits réservés. | Plan du site MEILLEURES RECHERCHES Téléphone |
| Tél. | 86-18880477902 | javanais | E-mail |
| 8618880477902 | Chinois | Français | |
| Bird | Chinois | Français | Allemand Espagnol |
| Aquatic animals | japonais | coréen | arabe grec |
| turc | italien | ||
| Ruminant animal g/head day | January 0.75 | indonésien afrikaans suédois |
polonais
- Basque
- catalan
- Physicochemical parameters
hindi
Lao
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
Shona
bulgare
- Cebuano
- This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;
- The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;
- croate
Néerlandais
| Application object | ourdou vietnamien | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Gujarati | haïtien | Haoussa | Kinyarwanda Hmong hongrois |
| Piglets and fattening pigs | Igbo | javanais | Kannada Khmer kurde |
| Kirghize | latin | ||
| Bird | 300～400 | 45～60 | Macédonien malais Malayalam |
| Aquatic animals | 200～300 | 30～45 | 1. Promote growth, improve feed conversion; 2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality. |
norvégien
- Pachtoune
- Appearance: brownish-yellow granules
- Physicochemical parameters
serbe
Sesotho
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
Shona
Sindhi
This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;
Swahili
Tadjik
tamoul
Telugu
thaïlandais
| Application object | ourdou vietnamien | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| yiddish | Yoruba | zoulou | Kinyarwanda Oriya Turkmènes |
| Ouïghours | 250～400 | 37.5～60 | 1. Improving the immunity of piglets, reducing diarrhea and mortality; 2. Improving palatability, increasing feed intake, increasing growth rate and improving feed conversion; 3. Make the pig coat bright and improve the carcass quality and meat quality. |
| Bird | 300～400 | 45～60 | 1. Improve feather glossiness; 2. improve the laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, and strengthen the coloring ability of egg yolk; 3. Improve anti-stress ability and reduce mortality; 4. Improve feed conversion and increase growth rate. |
| Aquatic animals | January 300 | 45 | 1. Promote growth, improve feed conversion; 2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality. |
| Ruminant animal g/head day | 2.4 | 1. Improve milk yield, prevent mastitis and foof rot, and reduce somatic cell content in milk; 2. Promote growth, improve feed conversion and improve meat quality. |
4. Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
- Product Name: Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
- Appearance: brownish-yellow granules
- Physicochemical parameters
a) Mn: ≥ 10.0%
b) Total amino acids: ≥ 19.5%
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
n=0, 1,2,...indicates chelated manganese for dipeptides, tripeptides, and tetrapeptides
Characteristics of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;
This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;
The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;
The product can improve the growth rate, improve feed conversion and health status significantly; and improve the laying rate, hatching rate and healthy chick rate of breeding poultry obviously;
Manganese is necessary for bone growth and connective tissue maintenance. It is closely related to many enzymes; and participates in carbohydrate, fat and protein metabolism, reproduction and immune response.
Usage and Efficacy of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
| Application object | Suggested dosage (g/t full-value material) | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Breeding pig | 200～300 | 30～45 | 1. Promote the normal development of sexual organs and improve sperm motility; 2. Improve the reproductive capacity of breeding pigs and reduce reproductive obstacles. |
| Piglets and fattening pigs | 100～250 | 15～37.5 | 1. It is beneficial to improve immune functions, and improve anti-stress ability and disease resistance; 2. Promote growth and improve feed conversion significantly; 3. Improve meat color and quality, and improve lean meat percentage. |
| Bird | 250～350 | 37.5～52.5 | 1. Improve anti-stress ability and reduce mortality; 2. Improve laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, improve eggshell quality and reduce shell breaking rate; 3. Promote bone growth and reduce the incidence of leg diseases. |
| Aquatic animals | 100～200 | 15～30 | 1. Promote growth and improve its anti-stress ability and disease resistance; 2. Improve sperm motility and hatching rate of fertilized eggs. |
| Ruminant animal g/head day | Cattle 1.25 | 1. Prevent fatty acid synthesis disorder and bone tissue damage; 2. Improve reproductive capacity, prevent abortion and postpartum paralysis of female animals, reduce the mortality of calves and lambs, and increase the newborn weight of young animals. | |
| Goat 0.25 |
Part 6 FAB of Small Peptide-mineral Chelates
| S/N | F: Functional attributes | A: Competitive differences | B: Benefits brought by competitive differences to users |
| 1,52 | Selectivity control of raw materials | Select pure plant enzymatic hydrolysis of small peptides | High biological safety, avoiding cannibalism |
| 2 | Directional digestion technology for double protein biological enzyme | High proportion of small molecular peptides | More "targets", which are not easy to saturation, with high biological activity and better stability |
| 3 | Advanced pressure spray & drying technology | Granular product, with uniform particle size, better fluidity, not easy to absorb moisture | Ensure easy to use, more uniform mixing in complete feed |
| Low water content (≤ 5%), which greatly reduces the influence caused by vitamins and enzyme preparations | Improve the stability of feed products | ||
| 4 | Advanced production control technology | Totally enclosed process, high degree of automatic control | Safe and stable quality |
| 5 | Advanced quality control technology | Establish and improve scientific and advanced analytical methods and control means for detecting factors affecting product quality, such as acid-soluble protein, molecular weight distribution, amino acids and chelating rate | Ensure quality, ensure efficiency and improve efficiency |
Part 7 Competitor Comparison
Standard VS Standard
Comparison of peptide distribution and chelation rate of products
| Sustar's products | Proportion of small peptides（180-500） | Zinpro's products | Proportion of small peptides（180-500） |
| AA-Cu | ≥74% | AVAILA-Cu | 78% |
| AA-Fe | ≥48% | AVAILA-Fe | 59% |
| AA-Mn | ≥33% | AVAILA-Mn | 53% |
| AA-Zn | ≥37% | AVAILA-Zn | 56% |
| Sustar's products | Chelation rate | Zinpro's products | Chelation rate |
| AA-Cu | 94.8% | AVAILA-Cu | 94.8% |
| AA-Fe | 95.3% | AVAILA-Fe | 93.5% |
| AA-Mn | 94.6% | AVAILA-Mn | 94.6% |
| AA-Zn | 97.7% | AVAILA-Zn | 90.6% |
The ratio of small peptides of Sustar is slightly lower than that of Zinpro, and the chelation rate of Sustar's products is slightly higher than that of Zinpro's products.
Comparison of the content of 17 amino acids in different products
| Name of amino acids | Sustar's Copper Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA copper | Sustar's Ferrous Amino Acid C helate Feed Grade | Zinpro's AVAILA iron | Sustar's Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA manganese | Sustar's Zinc Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA zinc |
| aspartic acid (%) | 1.88 | 0.72 | 1.50 | 0.56 | 1.78 | 1.47 | 1.80 | 2.09 |
| glutamic acid (%) | 4.08 | 6.03 | 4.23 | 5.52 | 4.22 | 5.01 | 4.35 | 3.19 |
| Serine (%) | 0.86 | 0.41 | 1.08 | 0.19 | 1.05 | 0.91 | 1.03 | 2.81 |
| Histidine (%) | 0.56 | 0.00 | 0.68 | 0.13 | 0.64 | 0.42 | 0.61 | 0.00 |
| Glycine (%) | 1.96 | 4.07 | 1.34 | 2.49 | 1.21 | 0.55 | 1.32 | 2.69 |
| Threonine (%) | 0.81 | 0.00 | 1.16 | 0.00 | 0.88 | 0.59 | 1.24 | 1.11 |
| Arginine (%) | 1.05 | 0.78 | 1.05 | 0.29 | 1.43 | 0.54 | 1.20 | 1.89 |
| Alanine (%) | 2.85 | 1.52 | 2.33 | 0.93 | 2.40 | 1.74 | 2.42 | 1.68 |
| Tyrosinase (%) | 0.45 | 0.29 | 0.47 | 0.28 | 0.58 | 0.65 | 0.60 | 0.66 |
| Cystinol (%) | 0.00 | 0.00 | 0.09 | 0.00 | 0.11 | 0.00 | 0.09 | 0.00 |
| Valine (%) | 1.45 | 1.14 | 1.31 | 0.42 | 1.20 | 1.03 | 1.32 | 2.62 |
| Methionine (%) | 0.35 | 0.27 | 0.72 | 0.65 | 0.67 | 0.43 | January 0.75 | 0.44 |
| Phenylalanine (%) | 0.79 | 0.41 | 0.82 | 0.56 | 0.70 | 1.22 | 0.86 | 1.37 |
| Isoleucine (%) | 0.87 | 0.55 | 0.83 | 0.33 | 0.86 | 0.83 | 0.87 | 1.32 |
| Leucine (%) | 2.16 | 0.90 | 2.00 | 1.43 | 1.84 | 3.29 | 2.19 | 2.20 |
| Lysine (%) | 0.67 | 2.67 | 0.62 | 1.65 | 0.81 | 0.29 | 0.79 | 0.62 |
| Proline (%) | 2.43 | 1.65 | 1.98 | 0.73 | 1.88 | 1.81 | 2.43 | 2.78 |
| Total amino acids (%) | 23.2 | 21.4 | 22.2 | 16.1 | 22.3 | 20.8 | 23.9 | 27.5 |
Overall, the proportion of amino acids in Sustar's products is higher than that in Zinpro's products.
Part 8 Effects of use
Effects of different sources of trace minerals on the production performance and egg quality of laying hens in the late laying period
Production Process
- Targeted chelation technology
- Shear emulsification technology
- Pressure spray & drying technology
- Refrigeration & dehumidification technology
- Advanced environmental control technology
Appendix A: Methods for the Determination of relative molecular mass distribution of peptides
Adoption of standard: GB/T 22492-2008
1 Test Principle:
It was determined by high performance gel filtration chromatography. That is to say, using porous filler as stationary phase, based on the difference in the relative molecular mass size of the sample components for separation, detected at the peptide bond of the ultraviolet absorption wavelength of 220nm, using the dedicated data processing software for the determination of relative molecular mass distribution by gel filtration chromatography (i.e., the GPC software), the chromatograms and their data were processed, calculated to get the size of the relative molecular mass of the soybean peptide and the distribution range.
2. Reagents
The experimental water should meet the specification of secondary water in GB/T6682, the use of reagents, except for special provisions, are analytically pure.
2.1 Reagents include acetonitrile (chromatographically pure), trifluoroacetic acid (chromatographically pure),
2.2 Standard substances used in the calibration curve of relative molecular mass distribution: insulin, mycopeptides, glycine-glycine-tyrosine-arginine, glycine-glycine-glycine
3 Instrument and equipment
3.1 High Performance Liquid Chromatograph (HPLC): a chromatographic workstation or integrator with a UV detector and GPC data processing software.
3.2 Mobile phase vacuum filtration and degassing unit.
3.3 Electronic balance: graduated value 0.000 1g.
4 Operating steps
4.1 Chromatographic conditions and system adaptation experiments (reference conditions)
4.1.1 Chromatographic column: TSKgelG2000swxl300 mm×7.8 mm (inner diameter) or other gel columns of the same type with similar performance suitable for the determination of proteins and peptides.
4.1.2 Mobile phase: Acetonitrile + water + trifluoroacetic acid = 20 + 80 + 0.1.
4.1.3 Detection wavelength: 220 nm.
4.1.4 Flow rate: 0.5 mL/min.
4.1.5 Detection time: 30 min.
4.1.6 Sample injection volume: 20μL.
4.1.7 Column temperature: room temperature.
4.1.8 In order to make the chromatographic system meet the detection requirements, it was stipulated that under the above chromatographic conditions, the gel chromatographic column efficiency, i.e., the theoretical number of plates (N), was not less than 10000 calculated on the basis of the peaks of the tripeptide standard (Glycine-Glycine-Glycine).
4.2 Production of relative molecular mass standard curves
The above different relative molecular mass peptide standard solutions with a mass concentration of 1 mg / mL were prepared by mobile phase matching, mixed in a certain proportion, and then filtered through an organic phase membrane with the pore size of 0.2 μm~0.5 μm and injected into the sample, and then the chromatograms of the standards were obtained. Relative molecular mass calibration curves and their equations were obtained by plotting the logarithm of relative molecular mass against retention time or by linear regression.
4.3 Sample treatment
Accurately weigh 10mg of sample in a 10mL volumetric flask, add a little mobile phase, ultrasonic shaking for 10min, so that the sample is fully dissolved and mixed, diluted with mobile phase to the scale, and then filtered through an organic phase membrane with a pore size of 0.2μm~0.5μm, and the filtrate was analyzed according to the chromatographic conditions in A.4.1.
5. Calculation of relative molecular mass distribution
After analyzing the sample solution prepared in 4.3 under the chromatographic conditions of 4.1, the relative molecular mass of the sample and its distribution range can be obtained by substituting the chromatographic data of the sample into the calibration curve 4.2 with GPC data processing software. The distribution of the relative molecular masses of the different peptides can be calculated by the peak area normalization method, according to the formula: X=A/A total×100
In the formula: X - The mass fraction of a relative molecular mass peptide in the total peptide in the sample, %;
A - Peak area of a relative molecular mass peptide;
Total A - the sum of the peak areas of each relative molecular mass peptide, calculated to one decimal place.
6 Repeatability
The absolute difference between two independent determinations obtained under conditions of repeatability shall not exceed 15% of the arithmetic mean of the two determinations.
Appendix B: Methods for the Determination of Free Amino Acids
Adoption of standard: Q/320205 KAVN05-2016
1.2 Reagents and materials
Glacial acetic acid: analytically pure
Perchloric acid: 0.0500 mol/L
Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)
2. Determination of free amino acids
The samples were dried at 80°C for 1 hour.
Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.
Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask.
Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture
Add 25 mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5 min.
Add 2 drops of crystal violet indicator
Titrate with 0.0500 mol / L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to the end point.
Record the volume of standard solution consumed.
Carry out the blank test at the same time.
3. Calculation and results
The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%) and is calculated according to the formula: X = C × (V1-V0) × 0.1445/M × 100%, in tne formula:
C - Concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)
V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).
Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);
M - Mass of the sample, in grams (g ).
0.1445: Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].
Appendix C: Methods for the Determination of Sustar's chelation rate
Adoption of standards: Q/70920556 71-2024
1. Determination principle (Fe as an example)
Amino acid iron complexes have very low solubility in anhydrous ethanol and free metal ions are soluble in anhydrous ethanol, the difference in solubility between the two in anhydrous ethanol was utilized to determine the chelation rate of amino acid iron complexes.
2. Reagents & Solutions
Anhydrous ethanol; the rest is the same as clause 4.5.2 in GB/T 27983-2011.
3. Steps of analysis
Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of the sample dried at 103±2℃ for 1 hour, accurate to 0.0001g, add 100mL of anhydrous ethanol to dissolve, filter, filter residue washed with 100mL of anhydrous ethanol for at least three times, then transfer the residue into a 250mL conical flask, add 10mL of sulfuric acid solution according to clause 4.5.3 in GB/T27983-2011, and then perform the following steps according to clause 4.5.3 “Heat to dissolve and then let cool” in GB/T27983-2011. Carry out the blank test at the same time.
4. Determination of total iron content
4.1 The principle of determination is the same as clause 4.4.1 in GB/T 21996-2008.
4.2. Reagents & Solutions
4.2.1 Mixed acid: Add 150mL of sulfuric acid and 150mL of phosphoric acid to 700mL of water and mix well.
4.2.2 Sodium diphenylamine sulfonate indicator solution: 5g/L, prepared according to GB/T603.
4.2.3 Cerium sulfate standard titration solution: concentration c [Ce (SO4) 2] = 0.1 mol/L, prepared according to GB/T601.
4.3 Steps of analysis
Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of sample, accurate to 020001g, place in a 250mL conical flask, add 10mL of mixed acid, after dissolution, add 30ml of water and 4 drops of sodium dianiline sulfonate indicator solution, and then perform the following steps according to clause 4.4.2 in GB/T21996-2008. Carry out the blank test at the same time.
4.4 Representation of results
The total iron content X1 of the amino acid iron complexes in terms of mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to formula (1):
X1=(V-V0)×C×M×10-3×100
In the formula: V - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;
V0 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;
C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L
5. Calculation of iron content in chelates
The iron content X2 in the chelate in terms of the mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to the formula: x2 = ((V1-V2) × C × 0.05585)/m1 × 100
In the formula: V1 - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;
V2 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;
C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L;
0.05585 - mass of ferrous iron expressed in grams equivalent to 1.00 mL of cerium sulfate standard solution C[Ce(SO4)2.4H20] = 1.000 mol/L.
m1-Mass of the sample, g. Take the arithmetic mean of the parallel determination results as the determination results, and the absolute difference of the parallel determination results is not more than 0.3%.
6. Calculation of chelation rate
Chelation rate X3, the value expressed in %, X3 = X2/X1 × 100
Appendix C: Methods for the Determination of Zinpro's chelation rate
Adoption of standard: Q/320205 KAVNO7-2016
1. Reagents and materials
a) Glacial acetic acid: analytically pure; b) Perchloric acid: 0.0500mol/L; c) Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)
2. Determination of free amino acids
2.1 The samples were dried at 80°C for 1 hour.
2.2 Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.
2.3 Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask
2.4 Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture.
2.5 Add 25mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5min.
2.6 Add 2 drops of crystal violet indicator.
2.7 Titrate with 0.0500mol/L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to green for 15s without changing color as the end point.
2.8 Record the volume of standard solution consumed.
2.9 Carry out the blank test at the same time.
3. Calculation and results
The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%), calculated according to formula (1): X=C×(V1-V0) ×0.1445/M×100%...... .......(1)
In the formula: C - concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)
V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).
Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);
M - Mass of the sample, in grams (g ).
0.1445 - Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].
4. Calculation of chelation rate
The chelation rate of the sample is expressed as mass fraction (%), calculated according to formula (2): chelation rate = (total amino acid content - free amino acid content)/total amino acid content×100%.
Post time: Sep-17-2025
